ECTS credits ECTS credits: 4.5
ECTS Hours Rules/Memories Student's work ECTS: 74.25 Hours of tutorials: 2.25 Expository Class: 18 Interactive Classroom: 18 Total: 112.5
Use languages Spanish, Galician
Type: Ordinary Degree Subject RD 1393/2007 - 822/2021
Departments: Microbiology and Parasitology, Physiology
Areas: Parasitology, Physiology
Center Faculty of Pharmacy
Call: Second Semester
Teaching: Sin docencia (Extinguida)
Enrolment: No Matriculable
Esta materia utiliza la formación obtenida en materias cursadas con anterioridad, del módulo de Medicina y Farmacología, especializándose en la descripción de técnicas inmunológicas y hematológicas de diagnóstico en el laboratorio clínico, y se complementa con otras como Análisis Microbiológico y Parasitológico, y Análisis Biológico y Diagnóstico Bioquímico que se imparten en cursos posteriores.
Programa de clases expositivas:
Tema 1: Recogida y procesado de las muestras. Métodos de extracción de sangre. Fraccionamiento de la sangre. Conservación y manipulación de las muestras.
Tema 2: Control de calidad y expresión de los resultados en Hematología.
Tema 3: Hemograma. Recuentos celulares. Fórmula leucocitaria. Hematocrito. Hemoglobina. Índices eritrocitarios. Velocidad de sedimentación globular.
Tema 4: Valoración general de las alteraciones cualitativas y cuantitativas de eritrocitos, leucocitos y plaquetas. Diagnóstico de anemias.
Tema 5: Exploración analítica de la hemostasia. Control de laboratorio de la terapia de los trastornos hemostáticos.
Tema 6: Inmunohematología. Grupos sanguíneos: Sistema ABO y Sistema Rh. Transfusiones sanguíneas. Reacciones transfusionales hemolíticas.
Tema 7. Inmunoensayos. Finalidad. Tipos. Inmunoensayos homogéneos y heterogéneos. Conceptos generales. Afinidad y avidez. Sensibilidad, especificidad y, detectabilidad. Precisión y exactitud. Reactividad cruzada y unión no específica (NSB). Antígenos. Naturaleza y tamaño de los antígenos. Epitopos simples y múltiples. Antígenos naturales y recombinantes.
Tema 8. Ligandos. Moléculas trazadoras convencionales: Trazadores fluorescentes. Trazadores enzimáticos. Trazadores radioactivos. Otras moléculas para el marcaje de antígenos y anticuerpos: Nanopartículas de oro coloidal. Microesferas de látex coloreado. Partículas magnéticas. Biotina. Aplicaciones.
Tema 9. Procedimientos de marcaje de antígenos y anticuerpos. Moléculas trazadoras convencionales: Trazadores fluorescentes. Trazadores enzimáticos. Trazadores radioactivos. Otras moléculas para el marcaje de antígenos y anticuerpos: Nanopartículas de oro coloidal. Microesferas de látex coloreado. Partículas magnéticas. Biotina. Aplicaciones.
Tema 10. Soportes para las reacciones antígeno-anticuerpo. Tipos. Capacidad de ligamiento. Ventajas e inconvenientes. Prevención de reacciones inespecíficas.
Tema 11. Inmunoensayos que no emplean moléculas marcadas. Reacciones de inmunoprecipitación, aglutinación y hemólisis. Concepto. Tipos. Factores condicionantes. Interpretación de resultados. Aplicaciones. Detección de reacciones antígeno-anticuerpo mediante nefelometría. Concepto. Factores condicionantes. Interpretación de resultados. Aplicaciones.
Tema 12. Inmunoensayos para la detección de antígenos en células y tejidos. Técnicas de inmunofluorescencia e inmunohistoquímica. Citometría de flujo. Fundamento. Tipos. Factores condicionantes. Aplicaciones.
Tema 13. Inmunoensayos que emplean moléculas trazadoras radiactivas o enzimas. Radioinmunoensayos. Fundamento. Tipos. Aplicaciones. Enzimo-inmunoensayos. Fundamento. Sustratos enzimáticos. EIAs homogéneos. EIAs heterogéneos indirectos y competitivos. Aplicaciones. EIAs amplificados. Concepto. Empleo de puentes. Reamplificación del producto primario. Amplificación mediante soportes multienzimáticos. Inmuno-PCR. Aplicaciones.
Tema 14. Inmunoensayos que emplean partículas trazadoras coloreadas. Inmunoensayos de difusión lateral (Pruebas inmunocromatográficas). Fundamento. Tipos. Aplicaciones.
Tema 15. Otros inmunoensayos con marcaje enzimático o fluorescente. Inmunodot (dot-blot). Inmunotransferencia. Tecnología de microarrays. Tipos. Fundamento. Aplicaciones.
Tema 16. Técnicas celulares funcionales. Determinación de células secretoras de anticuerpos o citoquinas: Técnicas CELISA y ELISPOT. Pruebas de histocompatibilidad: Test de linfocitotoxicidad. Fundamento. Aplicaciones.
Tema 17. Otras técnicas en alergia y autoinmunidad. Pruebas alérgicas in vivo (prick-test, prueba del parche, intradermorreacciones). Test de activación de basófilos. Fundamento. Interpretación de resultados.
Programa de clases prácticas:
Práctica 1. Determinación cuantitativa de hemoglobina. Determinación de hierro sérico. Exploración global de la coagulación. (3 horas)
Práctica 2. Estudio de las propiedades físicas de la sangre: VSG. Fragilidad osmótica de los hematíes. Hematocrito. (3 horas)
Práctica 3. Determinaciones funcionales con células: fagocitosis y producción de radicales libres del oxígeno (3 horas)
Práctica 4. Técnicas en serología: ELISA e inmunocromatografía (3 horas)
Práctica 5. Demostración de antígenos en tejidos: Western-blot (4 horas)
Básica
- J. L. Vives & J. L. Aguilar, Manual de técnicas de laboratorio en hematología, Ed. Masson, 3ª Ed., 2006.
- G. Ruiz Argüelles, Fundamentos de interpretación clínica de los exámenes de laboratorio, Ed. Panamericana, 2ª Ed., 2010.
- M. Carrasco, Inmunología. Aplicaciones prácticas en hematología y microbiología, Ed. Paraninfo Thomson Learning, 1995.
- K. Rittenhouse-Olson & E. De Nardin, Contemporary clinical immunology and serology, Ed. Pearson, 2013.
Complementaria.
- B. F. Rodak, Hematología: Fundamentos y aplicaciones clínicas, Ed. Panamericana, 2005.
- J. Sans-Sabrafen, C. Besses, J.L. Vives, Hematología Clínica, Elsevier, 2006.
- S. M. Lewis, B.J. Bain & I. Bates, Dacie y Lewis, Hematología Práctica, Elsevier, 10ª Ed., 2008.
- D. Wild, Immunoassay Handbook, Editorial Elsevier, 3rd Ed., 2005.
Competencias generales:
· 10: Diseñar, aplicar y evaluar reactivos, métodos y técnicas analíticas clínicas , conociendo los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y los contenidos de los dictámenes de diagnóstico de laboratorio
Competencias especificas:
. MF02: Conocer y comprender los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y contenidos de los dictámenes del diagnóstico de laboratorio
· MF03: Desarrollar los análisis higiénico-sanitarios (bioquímico, bromatológico, microbiológicos, parasitológicos) relacionados con la salud en general y con los alimentos y medio ambiente en particular
· MF14: Conocer las técnicas analíticas relacionadas con diagnóstico de laboratorio, tóxicos, alimentos y medio ambiente
Competencias transversales:
. CI09 Resolución de problemas
. CS01 Capacidad de aplicar los conocimientos a la práctica
La docencia contará con las siguientes actividades formativas:
A) Clases expositivas en grupo grande (“CE” en las tablas horarias). Se recomienda al estudiante la asistencia, pudiéndose controlar puntualmente la misma.
B) Seminarios. Al finalizar las clases teóricas se impartirán 2 clases de seminario por grupo para resolución de ejercicios prácticos.
C) Clases interactivas de laboratorio: Se controlará la asistencia. El alumno no superará la asignatura si no realiza las prácticas de laboratorio. Una vez realizadas las prácticas, éstas serán válidas en los cursos académicos posteriores, no teniendo fecha de caducidad.
D) Tutorías de pizarra en grupo muy reducido (“T” en las tablas horarias). Se programarán por el profesor a demanda de los alumnos.
1. El alumno no superará la asignatura si no realiza las prácticas de laboratorio.
2. La evaluación consistirá en:
a) Un examen escrito que constará de preguntas test, cortas, y/o caso clínico que supondrá un 90% de la nota final. Dos tercios del valor del examen corresponderá al contenido de Análisis Inmunológico y el tercio restante al de Hematología. Será necesario alcanzar una puntuación mínima del 40% en los contenidos de cada una de las partes (Análisis Inmunológico y Análisis Hematológico) como condición indispensable para superar la materia. En caso de no alcanzar ese mínimo la calificación que figurará en el acta será la de la parte suspensa.
b) Una evaluación continua en la que se valorará la participación a las clases expositivas e interactivas, lo que supondrá el 10% de la calificación final. Esta valoración se mantendrá tanto para la convocatoria de primera, como de segunda oportunidad y sólo tendrá validez para el curso académico en la que se obtuviese.
3. Los alumnos repetidores no tendrán que realizar nuevamente las prácticas si ya las han realizado en convocatorias anteriores.
4. Los criterios de evaluación de la segunda oportunidad serán los mismos que los de la primera oportunidad y sólo tendrán validez para el curso académico en la que se obtuviese.
Horas de trabajo presencial en el aula o en el laboratorio 45*
Horas trabajo personal del alumno 67,5*
Se recomienda llevar la materia al día para un mejor aprovechamiento de la misma, la asistencia a las clases expositivas, una dedicación regular, no avanzar sin entender y conocer la materia anterior, utilizar la plataforma virtual como complemento, consultar la bibliografía, utilizar las horas de tutorías para resolver las dudas, y leer el guión de prácticas antes de acudir a realizarlas.
Maria Jose Mancebo Seoane
- Department
- Physiology
- Area
- Physiology
- Phone
- 881814926
- maria.mancebo [at] usc.es
- Category
- Professor: Temporary PhD professor
Jose Manuel Leiro Vidal
Coordinador/a- Department
- Microbiology and Parasitology
- Area
- Parasitology
- Phone
- 881814893
- Category
- Professor: University Professor
Hipolito Gomez Couso
- Department
- Microbiology and Parasitology
- Area
- Parasitology
- Phone
- 881814889
- hipolito.gomez [at] usc.es
- Category
- Professor: Temporary PhD professor
Seila Couso Perez
- Department
- Microbiology and Parasitology
- Area
- Parasitology
- seila.couso.perez [at] usc.es
- Category
- Posdoutoral USC
Maria Del Mar Quiñones Tellez
- Department
- Physiology
- Area
- Physiology
- mar.quinones [at] usc.es
- Category
- Investigador/a Miguel Servet
Amanda Rodriguez Diaz
- Department
- Physiology
- Area
- Physiology
- amanda.rodriguez.diaz [at] usc.es
- Category
- Ministry Pre-doctoral Contract
Paola Fernandez Sanmartin
- Department
- Physiology
- Area
- Physiology
- paola.fernandez.sanmartin [at] usc.es
- Category
- Ministry Pre-doctoral Contract
Tamara Parracho Martínez
- Department
- Physiology
- Area
- Physiology
- tamara.parracho.martinez [at] usc.es
- Category
- Xunta Pre-doctoral Contract
Maria Luengo Mateos
- Department
- Physiology
- Area
- Physiology
- maria.luengo.mateos [at] usc.es
- Category
- Ministry Pre-doctoral Contract
| Thursday | |||
|---|---|---|---|
| 11:00-12:00 | Grupo A/CLE_01 | Spanish | 5035 Classroom 2.1 Faculty of Politics |
| 16:00-17:00 | Grupo B/CLE_02 | Spanish | 5035 Classroom 2.1 Faculty of Politics |
| Friday | |||
| 11:00-12:00 | Grupo A/CLE_01 | Spanish | 5035 Classroom 2.1 Faculty of Politics |
| 16:00-17:00 | Grupo B/CLE_02 | Spanish | 5035 Classroom 2.1 Faculty of Politics |